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    總局關于發(fā)布《植物蛋白飲料中植物源性成分鑒定》食品補充檢驗方法的公告(2017年第75號)

    放大字體 縮小字體 發(fā)布日期:2019-07-14 20:36:44 來源:互聯(lián)網(wǎng)

    發(fā)布單位

    國家食品藥品監(jiān)督管理總局

    國家食品藥品監(jiān)督管理總局

    發(fā)布文號 2017年第75號
    發(fā)布日期 2017-06-15 生效日期 2017-06-15
    有效性狀態(tài) 廢止日期 暫無
    屬性 通告公告 專業(yè)屬性 檢驗檢疫
    備注 http://www.sda.gov.cn/WS01/CL0087/174048.html

      按照《食品補充檢驗方法工作規(guī)定》,《植物蛋白飲料中植物源性成分鑒定》食品補充檢驗方法已經(jīng)國家食品藥品監(jiān)督管理總局批準,現(xiàn)予發(fā)布。

     

      特此公告。

     

      附件:   植物蛋白飲料中植物源性成分鑒定(BJS 201707)

     

      食品藥品監(jiān)管總局

     

      2017年6月15日


      附件

     

      植物蛋白飲料中植物源性成分鑒定BJS 201707

     

      1 范圍

     

      本方法規(guī)定了食品核桃源性成分、花生源性成分、杏仁源性成分、芝麻源性成分、榛子源性成分、大豆源性成分鑒定的實時熒光PCR方法。

     

      本方法適用于核桃露(乳)、杏仁露、果仁露等復合植物蛋白飲料中標識含有核桃源性成分、花生源性成分、杏仁源性成分、芝麻源性成分、榛子源性成分、大豆源性成分的檢測及鑒定。

     

      2 原理

     

      提取試樣中基因組DNA,以DNA為模板,利用物種特異性引物及探針進行實時熒光PCR擴增檢測,同時設置陽性、陰性及空白對照。根據(jù)擴增的Ct值,判定試樣中是否含有該源性成分。

     

      3試劑和材料

     

      除另有規(guī)定外,試劑為分析純或生化試劑。實驗用水符合GB 6682的要求。所有試劑均用無

     

      DNA酶污染的容器分裝。

     

      3.1核桃源性成分Jugr2基因檢測用引物對序列為:

     

      核桃5’端引物:5’-CGCGCAGAGAAAGCAGAG-3’

     

      核桃3’端引物:5’-GACTCATGTCTCGACCTAATGCT-3’

     

      核桃探針:5’-FAM-TTGTGCCTCTGTTGCTCCTCTTCCC-TAMRA-3’

     

      3.2花生源性成分Ara b2基因檢測用引物(對)序列為:

     

      花生5’端引物:5’-GCAACAGGAGCAACAGTTCAAG-3’

     

      花生3’端引物:5’-CGCTGTGGTGCCCTAAGG-3’

     

      花生探針:5’-FAM-AGCTCAGGAACTTGCCTCAACAGTGCG-Eclipse-3’

     

      3.3 杏仁源性成分Prudul基因檢測用引物(對)序列為:

     

      杏仁5’端引物:5’-TTTGGTTGAAGGAGATGCTC-3’

     

      杏仁3’端引物:5’-TAGTTGCTGGTGCTCTTTATG-3’

     

      杏仁探針:5’-FAM-TCCATCAGCAGATGCCACCAAC- Eclipse-3’

     

      3.4芝麻源性成分2S albumim mRNA基因檢測用引物(對)序列為:

     

      芝麻5’端引物:5’-CCAGAGGGCTAGGGACCTTC-3’

     

      芝麻3’端引物:5’-CTCGGAATTGGCATTGCTG-3’

     

      芝麻探針:5’-FAM-TCGCAGGTGCAACATGCGACC- TAMRA-3’

     

      3.5榛子源性成分oleosin基因檢測用引物(對)序列為:

     

      榛子5’端引物:5’-CCCCGCTGTTTGTGATAT-3’

     

      榛子3’端引物:5’-ATGATAATAAGCGATACTGTGAT-3’

     

      榛子探針:5’-FAM-TCCCGTTCTCGTCCCTGCGGT- Eclipse-3’

     

      3.6大豆源性成分Lectin基因檢測用引物(對)序列為:

     

      大豆5’端引物:5’-GCCCTCTACTCCACCCCCA-3’

     

      大豆3’端引物:5’-GCCCATCTGCAAGCCTTTTT-3’

     

      大豆探針:5’-FAM-AGCTTCGCCGCTTCCTTCAACTTCAC- TAMRA-3’

     

      3.7真核生物18SrRNA內(nèi)參照檢測用引物(對)序列為:

     

      內(nèi)參照5’端引物: 5’-TCTGCCCTATCAACTTTCGATGGTA-3’

     

      內(nèi)參照3’端引物: 5’-AATTTGCGCGCCTGCTGCCTTCCTT-3’

     

      內(nèi)參照探針:5’-FAM-CCGTTTCTCAGGCTCCCTCTCCGGAATCGAAC- TAMRA-3’

     

      3.8 CTAB緩沖液:55 mmol/L CTAB,1400mmol/L NaCl,20 mmol/L EDTA,100 mmol/L Tris,

     

      用10%鹽酸調(diào)節(jié)pH 至8.0,121℃高壓滅菌20 min, 備用。

     

      3.9 蛋白酶K:20mg/mL。

     

      3.10苯酚:氯仿:異戊醇(體積比:25:24:1)。

     

      3.11 異丙醇。

     

      3.12 70%乙醇。

     

      3.13 Taq DNA聚合酶。

     

      3.14 dNTP混合液。

     

      3.15 TE緩沖液(Tris-HCl、EDTA緩沖液):10mmol/L Tris-HCl(pH8.0),1 mmol/L EDTA(pH8.0)。

     

      3.16 10×PCR緩沖液:200 mmol/L KCl,15 mmol/L MgCl2,200 mmol/L Tris-HCl(pH8.8)。

     

      4儀器和設備

     

      4.1 組織研磨器。

     

      4.2 核酸蛋白分析儀或紫外分光光度計。

     

      4.3 恒溫水浴鍋。

     

      4.4 離心機:離心力12,000g。

     

      4.5 微量移液器(0.5μL~10μL,10μL~100μL,10μL~200μL,100μL~1000μL)。

     

      4.6 實時熒光PCR儀。

     

      4.7 渦旋振蕩器。

     

      4.8 天平:感量0.01g。

     

      5分析步驟

     

      5.1 試樣總DNA的提取

     

      固體樣品:將樣品粉碎后稱取0.3~0.6 g,按下列方法提取DNA。也可用等效商品化DNA提取試劑盒提取DNA。

     

      液體樣品:取1 mL 樣品于Eppordorf管中,加入1 倍體積的異丙醇,混合均勻,室溫下沉淀5 min,室溫下以12,500 rpm 離心5 min,棄去上清液。重復此操作一次。所得的沉淀用于提取DNA。可按下列方法提取DNA,也可用等效商品化DNA提取試劑盒提取DNA。

     

     ?。?)將處理后的樣品加入2 mL離心管中,加入600 μL CTAB緩沖液和40 μL蛋白酶K溶液,振蕩混勻,65℃孵育1 h(過夜孵育更好), 期間每隔10 min振蕩混勻;

     

     ?。?)加入500 μL的苯酚:氯仿:異戊醇(25:24:1),振蕩抽提10 min,室溫下以12,500 rpm 離心10 min;

     

     ?。?)小心吸取上清液,加入等體積的異丙醇,振蕩均勻,12,500 rpm 離心10 min;

     

     ?。?)棄去上清液,用65℃預熱的TE緩沖液溶解DNA;

     

     ?。?)小心吸取上清,加入200 μL氯仿:異戊醇(24:1),振蕩抽提,室溫下以12500 rpm 離心15 min;

     

     ?。?)小心吸取上清液,加入等體積的異丙醇,振蕩均勻,12,500rpm 離心10 min;

     

     ?。?)棄去上清液,沉淀用70% 乙醇洗滌,離心1min,晾干,溶于50μLTE 緩沖液中。

     

      5.2 DNA濃度和純度的測定

     

      取1μL DNA溶液,使用核酸蛋白分析儀檢測其濃度及質(zhì)量,OD260/280值應在1.7~1.9之間時,適宜于PCR擴增。

     

      5.3 實時熒光PCR擴增

     

      反應體系總體積為25μL,其中10×PCR緩沖液5μL,正反向引物(10μmol/L)各1μL,探針(10μmol/L)1μL,dNTPs(10μmol/L)2μL ,Taq DNA聚合酶(2.5U)0.2 μL,DNA模板(10-100ng/μL)2μL,用滅菌去離子水補足至總體積25μL。真核生物內(nèi)參照的反應體系同上,僅替換相應的引物和探針。也可使用相應的商品化擴增試劑盒。

     

      反應參數(shù):50℃ 2min; 95℃ 15min; 95℃ 15s, 60℃ 1min, 40個循環(huán)。

     

      5.4 實驗對照

     

      檢驗過程分別設陽性對照、陰性對照、空白對照。以相應植物源物種提取的DNA為陽性對照,以已知不含該植物源的物種DNA為陰性對照,以滅菌水為空白對照。樣品、內(nèi)參照和對照設置兩個平行的反應體系。

     

      6結果判斷與表述

     

      6.1 質(zhì)量控制

     

      以下條件有一條不滿足時,結果視為無效:

     

      (a)空白對照:無FAM熒光信號檢出;

     

     ?。╞)陰性對照:無FAM熒光信號檢出;

     

      (c)陽性對照:有FAM熒光信號檢出,且FAM通道出現(xiàn)典型的擴增曲線,Ct值≤35.0;

     

     ?。╠)內(nèi)參對照:有熒光對數(shù)增長,且熒光通道出現(xiàn)典型的擴增曲線,相應的Ct值<30.0。

     

      6.2 結果判定

     

     ?。╝)如Ct值≤35.0,則判定為被檢樣品陽性;

     

      (b)如Ct值≥40.0,則判定為被檢樣品陰性;

     

     ?。╟)如35.0<Ct值<40.0,則重復試驗一次。如再次擴增后Ct值仍為35.0<Ct值<40.0,則判定被檢樣品可疑。

     

      6.3 結果表述

     

      結果為陽性者,結合產(chǎn)品標識,表述為“檢出XX源性成分”。

     

      結果為陰性者,結合產(chǎn)品標識,表述為“未檢出XX源性成分”。

     

      結果為可疑者,結合產(chǎn)品標識,表述為“XX源性成分可疑”。

     

      7防污染措施

     

      檢測過程中放置交叉污染的措施按照GB/T 27403中的規(guī)定執(zhí)行。

     

      本方法負責起草單位:河北省食品檢驗研究院。

     

      驗證單位:中國食品藥品檢驗研究院、北京市食品安全監(jiān)控和風險評估中心、湖北省食品質(zhì)量安全監(jiān)督檢驗研究院、武漢食品化妝品檢驗所、河北出入境檢驗檢疫局檢驗檢疫技術中心、中國肉類食品綜合研究中心。

     

      主要起草人:周巍、王爽、章晶晶、崔生輝、李永波、孫勇。


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